云南省文山市疾病预防控制中心 云南文山 663000
【摘要】目的:通过利用平皿计数法与PCR检测法对生活饮用水菌落总数进行检测,针对两种方法的特性指标进行研究以及实际水样进行比对,验证PCR检测法的可靠性和优越性。方法:摘选2021年2月--2024年1月的180份生活饮用水样本作为研究对象,PCR检测法定为观察组,平皿计数法即为对照组,通过实验对比检测效果。结果:观察组菌落总数检出率、检测时长均优于对照组,P<0.05具有临床统计学意义;研究组的检验耗时为(5.26±0.50)小时,而对照组的检验耗时为(27.30±1.25)小时。对比后有统计学意义,P<0.05。结论:PCR检测法相较于传统的平皿计数法明显降低耗时,提高检出率,体现了该方法在疾控应急检测工作的重要价值和意义。
【关键词】平皿计数法;PCR检测法;
长期以来,平皿计数法一直是最主要的检测手段。这种传统方法虽然能够对各种微生物样本进行检测,但其缺点也显而易见,包括检测所需时间较长以及检测灵敏度较低,这导致最终的微生物检出效果往往无法满足预期目标[1]。随着社会对微生物检测需求的日益增长,检测方法也在不断进步和更新。在这种背景下,PCR检测法的应用范围逐渐扩大,因其高灵敏度、低耗时和高检出率等显著优势而被广泛应用于微生物检验领域,并取得了显著的成果。鉴于此,本文摘选2021年2月--2024年1月的180份生活饮用水标本作为研究对象,分析两种检测方法的比对效果。
1.1 资料
摘选2021年2月--2024年1月的180份生活饮用水标本作为研究对象,PCR检测法定为观察组,平皿计数法即为对照组。
1.2 方法
对照组采用了传统的平皿计数法来进行菌落总数的计数,具体如下:以无菌操作方法用无菌吸管或移液器吸取1mL充分混匀的水样,注入无菌平皿中,倾注约15mL已融化并冷却到45℃左右的营养琼脂培养基,并立即旋摇平皿,使水样与培养基充分混匀。每次检验时应做一平行接种,同时另用一个平皿只倾注营养琼脂培养基作为空白对照。 待冷却凝固后,翻转平皿,使底面向上,置于36℃±1℃培养箱内培养48 h±2h,进行菌落计数,即为1 mL水样中的菌落总数。
观察组采用了PCR检测法对水样中的菌落总数进行计数,操作步骤如下:1.水样采集: 在辖区内随机抽取生活饮用水,采用无菌操作直接采集,取水量500mL,4h内送至实验室。2.DNA提取:使用DNA提取试剂盒,按照说明书操作,从水样中提取细菌DNA。3.PCR扩增:配置PCR反应体系,包括引物、酶、缓冲液、dNTPs及提取的DNA模板。将反应体系置于PCR仪中,设置适当的扩增程序(如温度循环),进行DNA扩增。4.琼脂糖凝胶电泳:制备琼脂糖凝胶,并将其置于电泳槽中。将PCR扩增产物与加载缓冲液混合后,点样于凝胶上。进行电泳,使DNA片段在电场作用下分离。使用紫外灯观察电泳结果,记录并分析条带的位置和亮度,以评估菌落总数。5.数据分析:根据电泳结果中的条带数量和亮度,结合已知的标准曲线或定量方法,计算水样中的菌落总数。
1.3 观察指标
计算检测结果(检出率)
1.4 统计学分析
使用SPSS 27.0统计软件对本研究数据进行分析,计量资料用(均数±标准差)表示,T检验比较,计数资料表示为“百分比”,组间采用卡方检验比较,计算P值,当<0.05时,分析统计学意义。
2.1 组间检测效果分析
观察组检出率高于对照组,P<0.05具有临床统计学意义。
表 1 组间检测效果分析[n/%]
分组 | 例数 | 检出率 |
观察组 | 180 | 176(97.78) |
对照组 | 180 | 142(80.00) |
X2 | 14.400 | |
P | 0.000 |
2.2 检测耗时
研究组的检验耗时为(3.50±0.50)小时,而对照组的检验耗时为(48±0.5)小时。对比后有统计学意义,P<0.05.
水质检测是保障水资源安全和人类健康的重要环节。菌落总数是水体微生物污染程度的整体指示性指标,是评价水体卫生的重要指标,目前检测水中菌落总数的方法主要为平皿计数法,该法来自《生活饮用水标准检验方法 微生物指标》(GB/T 5750.12—2023)规定,用平皿计数法测定生活饮用水及其水源水中的菌落总数,该方法自1985年使用至今已将近40年,没有更新,即在需氧情况下,于37 ℃培养48 h,能在普通营养琼脂平板上生长的细菌菌落总数。该方法具有一定的局限性:对于厌氧菌、有特殊营养要求的以及非嗜中温的细菌,方法条件不能满足其生理需求,故难以繁殖生长[2];对于地表水等菌落总数较高的样品,检测需进行大量的稀释,人为误差较大;同时,该方法仅选取1 mL样品进行检测,地表水等水源水检测需要的稀释倍数较大,结果读数耗时且人为误差较大,试验操作中培养基温度要求严格,因此平皿计数法不能满足实验室大量样本及应急检测的需要。对于部分清洁样品来说,取样量较少,样本的代表性相对不足。PCR检测法是一种基于DNA扩增的水质菌落总数检测方法。它利用特定的引物和酶,在聚合酶链反应的条件下,扩增水样中细菌的DNA片段。通过测定扩增产物的数量可以间接测定水质菌落总数。PCR检测法具有高灵敏度和高特异性,并且可以快速得结果。PCR(聚合酶链反应)法因其高灵敏度、高特异性及快速检测的特点,在水质检测领域得到了广泛应用。鉴于PCR检测法测定水中菌落总数还未正式纳入相关水质标准中,且该方法所用试剂耗材价格相对较贵,PCR检测法可作为平皿计数法检测菌落总数的补充手段
[3]。PCR检测法在应急突发事件中现场检测方面有很大的应用前景,作为平皿计数法检测菌落总数的补充,将成为一种发展趋势,将来代替平皿计数法也未可知。
参考文献:
[1] 黄幼娜,张海凤,罗文明. 微生物检测技术在生活饮用水检验中的价值[J]. 食品安全导刊,2023(8):62-64,74.
[2] 姚静,刘若楠,王聪,等. 生活饮用水中菌落总数的测定方法优化[J]. 中外食品工业,2023(21):55-57.
[3] 徐新龙,杨杰,李玉龙,等. 浅析生活饮用水中水质微生物检测能力验证的结果与质量控制[J]. 食品安全导刊,2023(22):103-106,111.