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【摘要】现代免疫学技术广泛运用于医疗机构的检验中,文中从荧光素标记的免疫测定,酶标记免疫测定等方面,探索了免疫学检验技术应用的研究进展情况,旨在为免疫学检验技术的应用提供技术参考。
【主题词】医学检验;免疫学;技术应用;研究;进展
现代免疫学起源于标签技术的开发。1941年Coons等人创建了荧光素标记抗体技术之后,Yalaw等人在1950年代后期到1960年代初期确立了放射免疫分析技术[1]。1966年,法国和美国学者同时又报告了酶免疫测定法。另一种传统的标记技术是胶体金标免疫,发展于20世纪80年代,除了免疫电子显微镜检查的应用外,免疫过滤和免疫层析试验也被广泛使用。此外,科学家还发现了一些新的标记免疫技术,如元素标记、核酸标记、量子点标记免疫测定技术等。从这些技术中衍生出来的实验方法,有些已被广泛应用于临床免疫学检查,而有些仍处于研究和探索阶段[2]。本文主要对免疫学检验技术的应用以及研究进展做综述,报告过程与结果如下:
1 荧光素标记的免疫测定技术
1.1 间接免疫荧光技术(IFA)。 此技术作为细胞内抗原定位和对应抗体检测的“金标准”,从很早以前就开始使用,适用于筛选实验,主要使用抗核抗体(ANA)、抗ds-DNA抗体、抗平滑肌抗体。(AS-MA)和抗平滑肌抗体(AS-MA)。检测自身抗体(如中性粒细胞细胞质抗体)和特定病原体(EB病毒、SARS病毒、军团菌、其他呼吸道病原体)的抗体。完全自动的操作系统已经商品化了。其技术特点是减少手动操作可能引起的偶发错误,改善免疫测试的标准化和自动化,减少实验所需要的时间。
1.2 流式细胞免疫荧光分析(FCM)技术。该技术借鉴荧光抗体和血细胞分析装置的原理,并利用相对细胞数从绝对数量从膜组成,细胞组成,细胞内单色荧光到多色荧光的开发经验,并免疫分子表达型过程和统合分析型表达的组合,是为细胞分析和筛选的最重要的工具。在细胞表型分析、DNA含量和细胞周期分析、细胞内和核膜组成分析和细胞分选等领域中有着非常广泛的用途。
1.3 以荧光素标记为基础的四聚体分析技术。该技术主要是基于MHC /抗原肽复合物和T细胞表面受体(TCR)之间相互作用的原理而形成。首先,选择能被抗原特异性T细胞识别的表位肽和与表位肽结合的HLA。形成HLA-肽复合物的分子。进一步生物素化后以特定的比例与用特定的荧光素(PE等)标记的链霉亲合素进行混合[3]。这样构筑的四聚体能够通过自身的MHC分子提取物中的表位肽为了达到准确检测抗原特异性细胞的目的,在T细胞表面鉴定TCR,并进行组合。由此而来的技术的主要类型如下。(1) MHC-肽四聚体流式细胞术的特点是迅速、高灵敏度、特异性,无论这些细胞是原始的还是具有效应、功能或非功能性都可以对所有抗原特异性T细胞进行计;(2) 原位MHC-肽四聚体染色法(IST)。分为直接法和间接法,用于组织切片的染色,以及检测抗原特异性T细胞的空间和时间的分布;(3) MHC-肽四聚体磁分离磁技术,分离出抗原特异性T细胞可以用于对其的生物学功能进一步分析;(4) MHC-肽四聚体ELISA法;(5) MHC-肽四聚体分子微阵列技术。上述基于荧光素标记的基础四聚体分析技术适用于病毒(HBV, HCV, HIV等)抗原,肿瘤抗原特异性T细胞,以及与自身免疫性疾病(ART)相关的自身反应性T细胞(ART)的测定与研究中。
2 酶标记免疫测定技术(EIA)
2.1 酶联免疫吸附试验(ELISA)技术。理论上,只要得到特定抗原或对应抗体制剂的纯产物,对应抗体或抗原就能够进行ELISA的测定。因此,几乎所有的可溶抗原和抗体系统都可以用这个技术来检测。其特征是实验结果具有较高的灵敏度和特异性,最小的测定值有可能达到ng或pg的水平,但也容易受到诸多因素(如包被抗原、抗体质量、微孔板表面吸附性能程度等)的干扰。与放射免疫分析技术比较,ELISA技术的优点是标记试剂比较稳定,没有放射性危险,在血源病原体(抗原和抗体)、体液中的各种微量蛋白质(肿瘤标志物、细胞因子、小分子激素、自身抗体、特定药物和药物等)中有广泛的用途。除了手动操作之外,现在有自动化的酶(开放式和封闭式)系统,可以根据需要选择合适的试剂,也可以在仪器中配套的试剂中进行使用。
2.2 以酶标记为基础的免疫印迹和免疫斑点技术。虽然免疫印迹和免疫斑点测量密切相关,但却是两种不同的分析方法。前者是利用SDS-PAGE分离组织、细胞或细菌溶解物的蛋白质成分,并将其转录到硝基纤维素(NC)膜上进行分析。后者是将纯化或基因重组后的蛋白质抗原在NC膜表面以点或线性形式直接固相化。之后与样品的反应,酶结合抗体,以及颜色渲染的过程是完全一样的
[4]。由于实验使用蛋白质亚单位或纯抗原分子,这项技术可以用于特定抗原或抗体,例如HIV和HCV感染的诊断测试,抗核抗体的ENA多肽抗体保留物、特定过敏原(IgE靶抗原)和其他项目。除定性检查外,还可以在实验中扫描色带或光斑,报告定量测量结果。
2.3 酶联免疫斑点技术(ELIs-pot)技术。ELIspot是为了测定分泌免疫球蛋白的B细胞和分泌细胞因子以及T细胞的功能而基于ELISA方法开发的分析技术。定量ELISA技术的延伸以及发展。该方法原理和实验计划是在微孔培养板底部针对特定的ig或CK涂覆特定的单克隆抗体。将测试的外周血单核细胞(PBMC)加入到微型孔板中进行培养。在特定抗原和胺基酸的作用下,记忆型B细胞和T细胞在数小时内被激活,分泌Ig和CK。位于细胞下方的固相单克隆抗体捕获。细胞被洗去后,被捕获的Ig或细胞因子与接下来加入的生物合成抗体结合,接着加入酶标记亲合素与生物素反应,使酶基质显色,阳性细胞就会在固相板的底部形成了直径约50 ~ 200φm的圆形着色斑点。每个点对应一个分泌Ig或CK的细胞,斑点的直径直接反映特定阳性B和T细胞内群体的产能。
该技术除了对分泌抗体的B细胞进行初期检测外,还用于检测T细胞分泌的各种CK情况,因此ELIspot成为免疫学研究中测定T细胞功能的标准技术。其优点是提供了接近体内的实验环境,在几乎自然的生理学条件下,可以观察单个细胞分泌免疫学活性物质的过程。能以百万分之一的频率检测出阳性细胞。这种检测分辨率通过四聚体染色和ELISA法的测定远远超过了细胞内细胞的灵敏度。因为该种技术会受到更多因素的干扰,所以需要更严密的实验操作。包括抗体包被、清洗、添加活性剂(特定抗原肽等)、细胞的接种和培养,这些都需要严格灭菌。细胞培养过程中应避免移动,减少碰撞、开关培养箱的次数,否则会引起细胞位移,引起模糊的斑点和变形。同时,有更多重复孔,需要设置阳性、阴性和空白对照。为了进一步实现不同实验者以及实验室中测定结果的可比较性,还需要定量的质量管理系统。以核心实验室的质量控制细胞作为质控品,对该实验室中的测定结果进行质量检验。
3 结语
实验中使用抗原体系中,过去从组织或细胞溶解物提取的抗原基因工程抗原逐渐变化,从单一病原体蛋白质多决策融合性蛋白转变,并发现了重组抗原不包括极少数非特异性抗原,可以设计和表达针对特定目标蛋白质的特异性多肽类抗原片段;在抗体系统中,从多克隆和单克隆抗体转变为基因改造的抗体和双功能性抗体。基因重组供给和小型化单链可变区(VH和VL)片段(scFv)抗体。检测系统还实现了自动化、集成和小型化(如蛋白质芯片和免疫传感器的应用。这一发展趋势有助于实验操作的标准化和规范化,提高实验结果的准确性和可重复性,促进实验室之间测试结果的互认。
参考文献
[1]戴随.免疫学检验技术的研究进展[J].首都食品与医药, 2021, 28(2):2.
[2]戴随.免疫学检验技术的研究进展[J]. 首都食品与医药, 2021, 28(2):2.
[3]李燕琼.免疫学快速检验技术的应用与进展[J].中国实用医药,2014,9(01):261-262.
[4]王蒴,王信惠,黎唯.鼠疫免疫学检测技术的应用和研究进展[J].中国媒介生物学及控制杂志,2019(2):4.